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转基因小鼠

制作转基因小鼠最常用的⼀种方法是DNA原核显微注射。DNA原核显微注射是指将外源DNA通过显微注射的方法注射到受精卵的原核内,注射DNA整合到小鼠受精卵的基因组中,并稳定遗传给后代。
转基因小鼠 - 基因编辑动物模型

转基因小鼠

转基因小鼠是通过基因工程技术,将外源基因导入小鼠基因组并稳定遗传的基因编辑动物模型,可实现基因过表达、功能增益等研究需求,广泛应用于生命科学、疾病机制研究、药物研发与药效评价等领域;与传统基因敲入模型不同,转基因小鼠多为随机插入外源基因,制备周期短、应用场景广,赛业生物可依托PiggyBac成熟技术体系提供各类定制化转基因小鼠模型构建服务。

赛业生物可提供哪些转基因小鼠定制服务?

围绕外源基因表达、基因功能调控和疾病机制研究需求,赛业生物可提供过表达转基因、microRNA转基因、RNAi转基因、可诱导性/组织特异性转基因及BAC转基因小鼠定制服务。

项目可结合外源片段、启动子、表达组织或诱导方式设计载体,并衔接原核显微注射、小鼠鉴定及后续繁育支持;需要进一步确认模型表现时,还可安排表型分析。

过表达转基因小鼠

通过构建广泛性、组织特异性、诱导性等不同的启动⼦和目的基因的表达载体,利⽤原核显微注射的方法将线性化后的表达载体注射到小鼠受精卵中,实现转基因在广泛性、组织特异性等特定条件下的表达。

过表达转基因小鼠

microRNA转基因小鼠

构建两种microRNA表达载体,通过原核显微注射将载体注射到受精卵中,实现microRNA过表达或者下调。

microRNA转基因小鼠

RNAi转基因小鼠

通常采用U6/H1驱动shRNA表达,设计靶序列构建shRNA载体,利⽤原核显微注射的方法将shRNA载体注射到受精卵中。在基因表达的过程中,通过shRNA的⼲扰作用,达到对目的基因表达的沉默抑制,实现基因功能的研究。

RNAi转基因小鼠

可诱导性/组织特异性转基因小鼠

将构建的广泛表达启动子-loxp-stop-loxp-转基因载体通过显微注射制备组织特异性转基因小鼠模型, 转基因在正常情况下并不表达,只有与相应的组织特异性表达Cre/CreERT2小鼠杂交后,因Stop终⽌序列在特定的组织中被去除,从⽽达到转基因在诱导性/特定组织中特异性表达的目的。

组织特异性转基因小鼠

BAC转基因小鼠

BAC是处理大片段DNA的重要工具,由于其完整性和保真度,可以更好的解释转基因的重要功能。因此,为了研究完整的时空特异性基因表达、基因结构及调控元件等,可以将BAC直接进行原核显微注射(约几十到几百Kb)或者将其改造后注射在小鼠或大鼠的受精卵中,以获得转基因鼠。

转基因小鼠建系原则与流程

1. 获得F0代小鼠:原核显微注射获得PCR阳性F0代杂合子小鼠,每只F0为独立谱系,单独繁殖。

2. 繁育获得F1代:F0代小鼠8周性成熟后与野生型小鼠交配,获得F1代小鼠。

3. 基因型鉴定:对F1代进行基因型鉴定,理论上50%为转基因杂合子,50%为野生型。

转基因小鼠建系流程

注意事项:

  • 每只F0代鼠基因型不同,不可自交,只能与野生型交配筛选F1。
  • F1鼠需进行蛋白表达鉴定,优先筛选表达鼠再传代保种。

PiggyBac(PB)高效转基因技术

利用PB转座子“剪切和粘贴”机制,使DNA片段在载体和基因组之间“自由”的转移,从而有效介导外源DNA片段对基因组的整合。转座时,转座酶有效的识别特异的转座子序列(ITRs),与转座子末端结合形成短暂的发夹结构,“剪切”后脱离,“粘贴”至基因组的TTAA位点。赛业实验数据表明,PiggyBac系统基因表达阳性率为常规质粒DNA显微注射的2倍以上!

PB高效转基因技术

PiggyBac(PB)转基因技术优势

  • 更高的整合效率:转座子介导整合效率远高于传统显微注射
  • 更高的目的基因表达概率:有效提升外源基因稳定表达率
  • 更大的目的片段插入:支持大片段外源基因高效整合
  • 更精确拷贝数插入:降低多拷贝插入带来的表达异常
  • 可自由移除插入片段:支持后续插入片段精准切除

为什么选择赛业开展转基因小鼠项目

覆盖多类转基因模型构建需求

可围绕过表达、microRNA、RNAi、可诱导性或组织特异性,以及BAC转基因等不同研究目标选择相应构建策略。

PiggyBac技术支持高效外源片段整合

针对需要稳定表达或较大片段插入的项目,可结合PiggyBac(PB)技术体系和载体设计需求,评估适合的转基因方案。

模型交付后可继续衔接研究支持

可进一步衔接繁育服务、表型分析及药效评价服务,支持后续功能验证与应用研究。

项目关键节点清晰

从载体设计、原核显微注射和小鼠鉴定,到定期进展反馈与模型交付,项目节点明确,便于团队同步项目进展。

转基因小鼠服务周期

1
质粒或BAC载体构建

周期:2-3周

2
原核显微注射到小鼠出生

周期:3周

3
小鼠的鉴定

周期:1-2周

转基因小鼠定制服务流程

1
需求沟通

专业技术顾问与您详细沟通,确认定制类型、目的基因、表达需求及交付标准。

2
确定方案

根据研究需求进行个性化方案设计,确认载体构建、注射方式及鉴定策略。

3
合同签订

双方签订服务合同,明确项目周期、交付标准与双方权责,启动项目。

4
项目执行

按方案完成载体构建、原核显微注射、小鼠繁育及基因型鉴定全流程。

5
定期汇报

实时同步项目进展,及时反馈载体构建、注射及繁育阶段关键信息。

6
模型交付

完成鉴定后,交付符合要求的转基因小鼠及完整鉴定报告。

7
项目完成

出具结题报告,提供专业的小鼠饲养、繁育及后续实验建议。

转基因小鼠服务常见问题

1. 转基因小鼠与基因敲入小鼠有什么不同?

转基因小鼠通常通过将外源基因随机整合至基因组,实现过表达或功能增益等研究目的;基因敲入模型则是在特定位点进行定向改造。实际选择需结合表达需求、位点要求及后续研究设计判断。

2. 什么情况下适合选择组织特异性或诱导性转基因策略?

当研究需要将外源基因表达限定在特定组织、细胞或时间窗口时,可考虑相应策略;这类模型通常需要结合Cre或CreERT2小鼠的选择,明确后续杂交与诱导方案。

3. 已有明确目标模型时,是否可以先查找现货?

可以。可先在智鼠商城模型库中检索相关模型;若没有匹配的现货模型,或需要指定外源片段、启动子和品系背景,再进一步评估定制方案。

4. 模型交付后还可以继续获得哪些支持?

可根据实验节奏继续衔接繁育扩群、表型分析或药效验证等服务,支持后续研究安排。

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